新型体内基因编辑技术！南京大学发文：揭示癌症免疫治疗新策略
1月31日，南京大学研究团队在期刊《Nature Communications》上在线发表题为“Bacterial protoplast-derived nanovesicles carrying CRISPR-Cas9 tools re-educate tumor-associated macrophages for enhanced cancer immunotherapy”的研究论文,研究人员开发了一种利用细菌衍生的NVs进行CRISPR-Cas9系统高效递送的体内基因编辑技术。这种方法使得内源性TAMs有效地重新编程，从而显著提高了肿瘤治疗的疗效，而不会引发全身免疫反应。研究结果表明，这种策略在癌症治疗中具有潜在的重要价值。
研究背景
CRISPR-Cas9基因编辑系统在癌症治疗中具有重要的潜力，因其能够精确靶向关键的癌基因和抑癌基因。然而，目前用CRISPR-Cas9进行癌症治疗的临床试验主要集中在从患者体内分离自体T细胞，经过CRISPR-Cas9介导的基因编辑后再重新输注给患者。在肿瘤微环境内安全有效地操作特定基因组序列仍然是CRISPR-Cas9在癌症治疗临床应用中的重大挑战。为了实现满意的抗癌疗效，CRISPR-Cas9治疗必须解决编辑细胞在体内适应性的重要问题。
癌细胞的癌基因和细胞死亡相关基因通常被选择为CRISPR-Cas9治疗的编辑靶点。编辑后的肿瘤细胞通常表现出减少的弹性、减少的增殖能力和增加的凋亡易感性。这可能导致未编辑的肿瘤细胞在肿瘤微环境中迅速占据肿瘤组织，终降低基因编辑工具介导的抗癌疗效。为了克服这一挑战，肿瘤相关巨噬细胞（TAMs）成为基因编辑的理想靶点。利用CRISPR-Cas9，可以敲除几个相关基因，将TAMs永久地重塑为抗肿瘤的M1型表型，同时保持其适应性。这些表型稳定的巨噬细胞可以持续发挥抗肿瘤作用，而不受免疫抑制性肿瘤微环境的影响，较大限度地提高基因编辑治疗的疗效。因此，除了肿瘤微环境中的肿瘤细胞外，TAMs代表着增强基因编辑治疗抗癌疗效的有前景的靶点。
研究发现
本研究开发了一种靶向肿瘤相关巨噬细胞(TAMs)的体内CRISPR-Cas9系统。研究人员使用了细菌原生质体衍生的纳米囊泡(NVs)，这些纳米囊泡由ph响应性PEG共轭磷脂衍生物和针对TAM靶向定制的半乳糖胺共轭磷脂衍生物修饰。利用质粒转化的大肠杆菌原生质体作为生产平台，研究人员成功地在NVs上装载了两个关键成分:靶向Pik3cg的Cas9-sgRNA核糖核蛋白，巨噬细胞极化的关键分子开关，以及富含CPG的细菌DNA片段，作为有效的TLR9配体。这种自组装方法有望用于可扩展的临床生产。策略是通过稳定TAMs中的M1表型来重塑肿瘤微环境，从而抑制雌性小鼠的肿瘤生长。这种体内CRISPR-Cas9技术为癌症免疫治疗开辟了道路，克服了与细胞活力和安全、精确的体内递送相关的挑战。
研究结果
综上所述，研究人员开发了一种利用细菌衍生的NVs进行CRISPR-Cas9系统高效递送的体内基因编辑技术。这种方法使得内源性TAMs有效地重新编程，从而显著提高了肿瘤治疗的疗效，而不会引发全身免疫反应。研究结果表明，这种策略在癌症治疗中具有潜在的重要价值。
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